1、如何鉴定小鼠是被切除胸腺还是骨髓
如果小鼠是被切除胸腺，有部分体液免疫功能；
如果小鼠是被切除骨髓，将丧失一切免疫功能。
2、小鼠骨髓瘤细胞 是什么
骨髓瘤细胞是一种癌细胞，他对小鼠造成伤害就是通过不断增殖造成的。所以最后小鼠会腹水，这时候可以从腹水中提取单克隆抗体。小鼠最终会因为骨髓瘤细胞过度繁殖死亡。就和患癌症一样，但是小鼠在实验室中有很多，所以实验室还用这个办法制备单克隆抗体。
3、小鼠骨髓幼稚细胞和lymphocyte的区别
小鼠骨髓幼稚细胞和lymphocyte的区别
成年人的骨髓分两种：红骨髓和黄骨髓。
红骨髓能制造红细胞、血小板和各种白细胞。血小板有止血作用，白细胞能杀灭与抑制各种病原体，包括细菌、病毒等；某些淋巴细胞能制造抗体。因此，骨髓不但是造血器官，它还是重要的免疫器官。
黄骨髓主要是脂肪组织，当人体贫血时，它可以转化为红骨髓。有些药物如氯霉素及呋喃类,在长期大量使用后,可影响骨髓造血功能,引起再生障碍性贫血.
4、请问一只小鼠有多少骨髓单个核细胞？
单核细胞（monocytes）是体积最大的白细胞.其细胞核常偏位,呈多形性,如卵圆形、肾形、马蹄形、不规则形等,常有折叠感；染色质呈疏松网状,着色较浅.胞质较多,嗜碱性,但因含大量细小的嗜天青颗粒而染成灰蓝色,颗粒含过氧化物酶.血涂片,Giemsa染色 .
单个核细胞是指只有一个细胞核的细胞.一般医学检验书上说的是“外周血中单个核的白细胞”包括“淋巴细胞和单核细胞”.外周血单个核细胞（Peripheral blood mononuclear
cell,PBMC)即外周血中具有单个核的细胞,包括淋巴细胞和单核细胞.体外检测淋巴细胞首先要分离外周血单个核细胞,目前主要的分离方法是
Ficoll-hypaque（葡聚糖－泛影葡胺）密度梯度离心法,因为血液中各有形成分的比重存在差异,因此得以分离.红细胞和
粒细胞密度大于分层液,同时因红细胞遇到Ficoll而凝集成串钱状而沉积于管底.血小板则因密度小而悬浮于血浆中,唯有与分层液密度相当的单个核细胞密
集在血浆层和分层液的界面中,呈白膜状,吸取该层细胞递经洗涤高心重悬.本法分离单个核细胞纯度可达95%,淋巴细胞约占90%～95%,细胞获得率可达
80%以上,其高低与室温有关,超过25℃时会影响细胞获得率.
5、做小鼠骨髓移植照光有什么要注意的
balb/c小鼠照8个Gy应该没有问题的，致死剂量是8.5
注意事项
1、小鼠是几周的，受体鼠最好是8周龄以上的
2、雄的比较容易活下来
3、骨髓单个核输注每只尾静脉1－2X10的7次方，你细胞是不是输得太少了
4、另外照完得老鼠要按裸鼠那样饲养，就是在SPF动物房养，用消过毒的笼子，食水都要消毒的
5、食用的水要用酸化水，PH值3－4的
6、如果小鼠照射完看着状态不好，可以腹腔给一点没有血清得培养基，如1640
7，想知道小鼠是不是造血衰竭死亡，你最好把刚刚死亡得小鼠骨髓切片，HE染色看一下，以前我碰见过小鼠别得细胞都恢复了，就是巨核恢复得慢，小鼠出血死掉。
8、当然放射源得数字不准，你可以摸一下照射得剂量梯度，如果照射的空白组死亡，而打同基因骨髓细胞的小鼠还活着，就是最佳的照射剂量了，
6、如何提取小鼠骨髓细胞?
1、颈椎脱臼法处死小鼠(C57型小鼠)，放在75%酒精中侵泡3-5分钟后，拎出后将小鼠铺于超净台上一个消毒托盘上。
2、无菌提取小鼠的四肢骨，用眼科镊小心捏起小鼠两髋关节之间的腹部皮肤，用眼科剪小心剪开皮肤，并分离两下肢的皮肤，往下在脚踝处剪断，往上在髋关节处剪断，这样可以游离出小鼠的两条下肢。
3、小心剥离肌肉，分别剪下Femurs（大腿骨）and Tibias（胫骨）,剪去两端软骨，露出红色的骨髓腔。注意尽可能少的剪走骨髓腔。用纱布将骨头上的肌肉用纱布擦拭干净。
4、拿一支1ml的无菌注射器，每支吸取1mlHBSS液，并用无菌的针头套管将之轻轻拧弯。轻轻插入骨髓腔，冲洗骨髓腔以获得骨髓，一般用2-3ml培养基冲洗两次，可冲出绝大部分细胞。
5、过滤：用2OO目的滤网过滤，将滤网的中央插入到离心管里面25px处，然后用注射器吸取骨髓液，慢慢将骨髓液经滤网注入离心管中，去除残渣。
6、离心：将离心管放置离心机中离心10分钟（1350r/min）
7、去上清，加入1ml红细胞裂解液ACK，静置3分钟，再加9ml HBSS溶液，进行离心10分钟，弃上清。
8、用HBSS液洗涤骨髓细胞2次，室温，1350r/min离心10分钟。计数活细胞，用培养基调整细胞浓度至1X106个细胞/ml.
9、在试管中加入RPMI-1640培养基，然后再加入20ng/ml的细胞因子GM-CSF、5%FBS、0.1%的2-巯基乙醇，
10、吸取培养基加入到沉淀中混匀，24孔板铺板培养，每个孔1ml.
7、如何取小鼠骨髓细胞
1、颈椎脱臼法处死小鼠(C57型小鼠)，放在75%酒精中侵泡3-5分钟后，拎出后将小鼠铺于超净台上一个消毒托盘上。
2、无菌提取小鼠的四肢骨，用眼科镊小心捏起小鼠两髋关节之间的腹部皮肤，用眼科剪小心剪开皮肤，并分离两下肢的皮肤，往下在脚踝处剪断，往上在髋关节处剪断，这样可以游离出小鼠的两条下肢。
3、小心剥离肌肉，分别剪下Femurs（大腿骨）and Tibias（胫骨）,剪去两端软骨，露出红色的骨髓腔。注意尽可能少的剪走骨髓腔。用纱布将骨头上的肌肉用纱布擦拭干净。
4、拿一支1ml的无菌注射器，每支吸取1mlHBSS液，并用无菌的针头套管将之轻轻拧弯。轻轻插入骨髓腔，冲洗骨髓腔以获得骨髓，一般用2-3ml培养基冲洗两次，可冲出绝大部分细胞。
5、过滤：用2OO目的滤网过滤，将滤网的中央插入到离心管里面25px处，然后用注射器吸取骨髓液，慢慢将骨髓液经滤网注入离心管中，去除残渣。
6、离心：将离心管放置离心机中离心10分钟（1350r/min）
7、去上清，加入1ml红细胞裂解液ACK，静置3分钟，再加9ml HBSS溶液，进行离心10分钟，弃上清。
8、用HBSS液洗涤骨髓细胞2次，室温，1350r/min离心10分钟。计数活细胞，用培养基调整细胞浓度至1X106个细胞/ml.
9、在试管中加入RPMI-1640培养基，然后再加入20ng/ml的细胞因子GM-CSF、5%FBS、0.1%的2-巯基乙醇，
10、吸取培养基加入到沉淀中混匀，24孔板铺板培养，每个孔1ml.